生物透射电子显微镜 电镜在线下单
品牌/型号：
日立高新技术公司 日立 HT 7700
样品要求：
样本初步用2.5%戊二醛固定即可交给我们;
单细胞收集样品：如细菌，肿瘤细胞，生殖细胞，部分真菌，部分藻类等。离心收集后黄豆大小。使用 1.5ml离心管（尖底）。
1.液体培养：轻微并短暂离心培养液后收集细胞，加入新鲜缓冲液，低温1000rpm/min（离心力不可过大，离心时间不可过长，避免机械挤压导致细胞变形。也可根据具体情况调整）离心5min，弃上清。滴加新鲜缓冲液重悬15min，低温1000rpm/min，离心5min，弃上清，重复2遍。样品加入戊二醛固定液后重悬，4℃固定过夜。建议采用液体培养的方式，利于样品清洗和收集。
2.固体培养：从培养基上刮取细胞群落，加入新鲜缓冲液，低温1000rpm/min离心5min后，弃上清。滴加新鲜缓冲液重悬15min，低温1000rpm/min离心5min，弃上清，重复2遍。样品加入戊二醛固定液后重悬，4℃固定过夜。
3.贴壁培养：轻轻刮下适量细胞，可选择酶解消化，具体事宜请查询相关文献后操作。加入新鲜缓冲液，低温1000rpm/min离心5min后，弃上清。滴加新鲜缓冲液重悬15min，低温1000rpm/min离心5min，弃上清，重复2遍。样品加入戊二醛固定液后重悬，4℃固定过夜，低温运输送样。
注意事项：消化离心收集芝麻粒到黄豆大小，PBS清洗后，再离心，戊二醛沿壁缓缓加入固定，不要将细胞打散，数小时后小心将细胞从管壁取下。培养细胞取材第一步要注意不能消化过头，按细胞传代时消化3分钟就会损伤细胞结构，胞膜通透性增大。消化半分钟，需要再加"刮"。
测试周期：
收到样品 20 工作日
服务特色：
测试前先沟通确认条件
